La impronta como método no invasivo de toma de muestra para el diagnóstico molecular de la leishmaniosis cutánea en población militar de Colombia

Resumen

Teniendo en cuenta que los métodos tradicionales de toma de muestra y diagnóstico para la leishmaniosis cutánea presentan limitaciones, como el frotis directo, cuya sensibilidad depende de la pericia del profesional, el aspirado de lesión que puede ser usado para detección de parásitos en lámina, su adn o para cultivos es demorado y exigente, y la biopsia de la lesión que es invasiva y dolorosa se comparó con el método de impronta en papel filtro de la lesión ulcerativa contra el método tradicional de aspirado mediante la técnica de pcr convencional utilizando como blanco una región del adn del kinetoplasto del parásito. En el presente trabajo, la pcr obtuvo una sensibilidad para impronta del 90,07% comparado con el aspirado, el 86,3%, que, además, por ser un método de toma de muestra no invasivo, con pocas exigencias para el transporte, se puede tomar directamente en el área de operaciones a muy bajo costo, resulta ser beneficioso para ser usado en los pacientes con leishmaniosis cutánea del Ejército Nacional de Colombia, que se encuentran en las diferentes áreas de operaciones.

Biografía del autor/a

Claudia Patricia Méndez Bejarano, Dirección de Sanidad Ejército Nacional

(Coronel), Bacterióloga, MSc en Ciencias Biológicas.

Julie Janeth Pérez Rico, Dirección de Sanidad Ejército Nacional

(Capitán), Bacterióloga, candidato a maestría en Ciencias Básicas Biomédicas
y Especialista en Docencia Universitaria.

Omaira Rodriguez Angarita, Dirección de Sanidad Ejército Nacional

(SMSM), Bacterióloga, MSc en Parasitología.

Daniel Augusto Velandia Rodríguez

(OPS), Químico, MSc en Microbiología.

Yanira Andrea Romero Barbosa

(OPS) Bacterióloga, Especialista en Auditoría y Garantía de la Calidad en Salud.

María Teresa Alvarado Flechas, Dirección de Sanidad Ejército Nacional

(SMSM), Bacterióloga, candidato a maestría en Salud Publica.

Tania Mabel Valbuena Pinzón

(SMSM), Bacterióloga, candidato a maestría en Salud Publica y Especialista en Epidemiología.

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.

Biografía del autor/a

Claudia Patricia Méndez Bejarano, Dirección de Sanidad Ejército Nacional

(Coronel), Bacterióloga, MSc en Ciencias Biológicas.

Julie Janeth Pérez Rico, Dirección de Sanidad Ejército Nacional

(Capitán), Bacterióloga, candidato a maestría en Ciencias Básicas Biomédicas
y Especialista en Docencia Universitaria.

Omaira Rodriguez Angarita, Dirección de Sanidad Ejército Nacional

(SMSM), Bacterióloga, MSc en Parasitología.

Daniel Augusto Velandia Rodríguez

(OPS), Químico, MSc en Microbiología.

Yanira Andrea Romero Barbosa

(OPS) Bacterióloga, Especialista en Auditoría y Garantía de la Calidad en Salud.

María Teresa Alvarado Flechas, Dirección de Sanidad Ejército Nacional

(SMSM), Bacterióloga, candidato a maestría en Salud Publica.

Tania Mabel Valbuena Pinzón

(SMSM), Bacterióloga, candidato a maestría en Salud Publica y Especialista en Epidemiología.

Referencias bibliográficas

www.who.int/mediacentre/factsheets/fs375/en/ [En línea]. - febrero de 2015. - 07 de marzo de 2016.

TDR_standar for cutaneous leishmaniasis clinical trials published.htlm [En línea] //http://www.who.int/tdr/news/2013 leishmaniasis_clinical_trials/en/. - 2013. - 07 de marzo de 2016.

Reithinger R & Dujardin JC. Molecular Diagnosis of Leishmaniasis: Current Status and Future Applications. J Clin Microbiol [internet] (2007) 45(1): p.21-25. Disponible en: PubMed doi: 10.1128/JMC.02029-06 (PMCID:PMC1828971).

https://doi.org/10.1128/JCM.02029-06

Magill AJ. Cutaneous leishmaniasis in the returning traveler. Infect Dis Clin North Am [internet] (2005). 19(1): 241-66 doi:.10.1016/j.idc.2004.11.005.

https://doi.org/10.1016/j.idc.2004.11.005

Boggild AK, Miranda-Verastegui C, Espinosa D, Arevalo J, Adaui V, Tulliano G, Llanos-cuentas A & Low DE. Evaluation of a Microculture Method for isolation of Leishmania Parsites from Cutaneous Lesions of patients in Peru . J clin Microbiol, 2007

https://doi.org/10.1128/JCM.01286-07

(11): 3680-3684. Published online 2007 sep 19. doi: 10.1128/JCM.01286-07 PMCID: PMC2168488.

https://doi.org/10.1128/JCM.01286-07

Boggild AK, Ramos A, P & Arevalo J. Diagnostic Performance of filter Paper Lesion Impression PCR for Secondarily Infected Ulcers and Nonulcerative Lesions Caused by Cutaneous Leishmaniasis. JClinMicrobiol [internet] 2011. 49(3):1097-1100.doi:10.1128/JCM. 02457-10 [PMCID:PMC 3067679].

https://doi.org/10.1128/JCM.02457-10

Faber WR, Oskam L, Van Gool T, Kroon NC, Knegt-Junk KJ, Hofwegen H, Van der wal AC, Kager PA Value of diagnostic techniques for cutaneous leishmaniasis. J.Am. Acad.Dermatol [internet] 2003. 49.p. 70-74. Disponible en: https://www.ncbi.nml.nih.gov/pubmed/12833011.

https://doi.org/10.1067/mjd.2003.492

Craine N, Parry J, JO'Toole, D'Arcy S, Lyons M, Improving blood-borne viral diagnosis. clinical audit of the up take of dried blood spot testing offered by a substance misure service. J Viral Hepat [internet] 2009. 16: 219-222. Disponible en: https://www.ncbi.nml.nih.gov/pubmed/19175879.

https://doi.org/10.1111/j.1365-2893.2008.01061.x

Wheat PF. History and development of antimicrobial susceptibility testing methodology. J. Antimicrob Chemotherapy. [ internet] 2001. 48( suppl 1): p. 1-4. Disponible en: https://www.ncbi.nml.nih.gov/pubmed/11420332.

https://doi.org/10.1093/jac/48.suppl_1.1

Desbois D, Roque-Afonso AM, Lebraud P, Dussaix E. Use of dried serum spots for serogical and molecular detection of hepatitis A virus J Clin Microbiol [internet] , 2009. 47(5): p.1536-1542.https://www.ncbi.nml.nih.gov/pubmed/19321728

https://doi.org/10.1128/JCM.02191-08

Ayele W, Schuurman R, Messele, T, Dorigo-Zetsma W, Mengistu Y, Goudsmit J, Paxton WA, de Baar MP, Pollakis G. Use of dried spots of whole blood, plasma, and mother's milk collected on filter paper for measurement of human immunodeficiency virus type 1 burden. J Clin Microbiol [internet] 2007. 45: p. 891-896.Disponible en https://www.ncbi.nml.nih.gov/pubmed/17251400.

https://doi.org/10.1128/JCM.01919-06

Brambilla D, Jennings C, Aldrovandi G, Bremer J, Comeau AM, Cassol SA, Dickover R, Jackson JB, Pitt J, Sullivan J. L, Butcher A, Grosso L, Reichelderfer P, Ficus S A. Multicenter evaluation of use of dried blood and plasma spots specimens in quantitative assays for human immunodeficiency virus RNA: measurement, precision, and RNA stability. J Clin Microbiol [internet] 2003. 41: p.1888-1893.Disponible en: jcm.asm.org/content/47/4/1107.full

https://doi.org/10.1128/JCM.41.5.1888-1893.2003

Martinez AW, Phillips ST, Whitsides GM, Carrilho E. Diagnostic for the developing world: microfluidic paper-based analytical devices. Analchem [internet] 2010. 82: p. 3-10.Disponible en: pubs.acs.org/doi/abs/10.1021/ac9013989.

https://doi.org/10.1021/ac9013989

Smit PW, Ivo E, Peeling RW, Mabey D, & Newton P N. Review Article: An overview of the clinical use of filter paper in the Diagnosis of tropical diseases. Am. J. Trop. Med. Hyg [internet] 2014. 90(2): p. 195-210 Disponible en: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24366501

https://doi.org/10.4269/ajtmh.13-0463

Boggild A K, Valencia B M, Espinosa D, Veland N, Ramos A P, Arevalo J, Llanos-cuentas A, Low, D E. Detection and species identification of Leishmania DNA from filter paper lesion impressions for patients with American cutaneous leishmaniasis. Clin Infect Dis [internet] 2010.50(1): p. E1-6. Disponible en: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed doi: 10.1086/648730.

https://doi.org/10.1086/648730

Degrave, W, Fernandes O, Cambell D, Bozza M, Lopez, U. Use of molecular probes and PCR for detection and Typing of Leishmania-a mini-Review. Mem Inst Oswaldo Cruz, Rio de janeiro,[internet] 1994. 89(3): p.463-469.Disponible en: www.scielo.br/pdf/mioc/v89n3/vol89(f3)_159-165_100.pdf

https://doi.org/10.1590/S0074-02761994000300032

Michalsky E M, Fortes-Dias CL, Pimenta P F, Secundino NF, Dias ES. Assessment of PCR in the detection of Leishmania spp in experimentally infected individual phlebotomine sandflies (Diptera: Psychodidae: Phlebotominae) Rev Med Inst Trop [internet] 2002 44(5): p. 255-9.Disponible en : www.scielo.br/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S00036- 46652002000500004.

https://doi.org/10.1590/S0036-46652002000500004

Jojoa Jojoa Sandra Jimena. Deteccion molecular de Leishmania spp en lesiones cutáneas del personal del Ejercito Nacional de Colombia expuesto en zonas endémicas. Maestria tesis,Universidad nacional de Colombia. [internet] 2012. [consultada el 6 de junio de 2016]. Disponible en: www.bdigital.Unal.edu.co/view/.../Jojoa_Jojoa_=3ASandra_Jimena=3A=3A,type.html

OMS http://apps.who.int/iris/bitstream/10665/82766/1/WHO TRS 949 spa.pdf [En línea]. - abril de 2010. - [consultada 6 de mayo de 2016.

Marques MJ, Volpini AC, Genaro O, Mayirink W, Romanha AJ. Simple form of clinical sample preservation and Leishmania DNA extraction from human lesions for diagnosis of American cutaneous leishmaniasis via polymerase chain reaction. Am J Trop Med Hyg [internet] 2001.65: p.902-6.Disponible en: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/11791996.

https://doi.org/10.4269/ajtmh.2001.65.902

Fadime E, Soner U, & Ismail S K.. Comparison of Clinical Samples and Methods in Chronic Cutaneous Leishmaniasis. Am J trop Med Hyg [internet] 2014. 91(5): 895-900. Disponible en: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4228882/

https://doi.org/10.4269/ajtmh.13-0582

Benssoussan E, Nasereddin A, Jonas M, Schnur L. F, Jaffe CL, Comparison of PCR assays for diagnosis of cutaneous Leishmaniasis. (2006). J Clinic Microbiol [internet] 2006. 44: 1435-1439. Disponible en: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC1448629/.

https://doi.org/10.1128/JCM.44.4.1435-1439.2006

Cómo citar
Méndez Bejarano, C. P., Pérez Rico, J. J., Rodriguez Angarita, O., Velandia Rodríguez, D. A., Romero Barbosa, Y. A., Alvarado Flechas, M. T. ., & Valbuena Pinzón, T. M. (2019). La impronta como método no invasivo de toma de muestra para el diagnóstico molecular de la leishmaniosis cutánea en población militar de Colombia. Revista Med, 26(2), 15–21. https://doi.org/10.18359/rmed.3037
Publicado
2019-12-23
Sección
Artículos

Métricas

Crossref Cited-by logo
QR Code