Detección Serológica y Molecular de Virus en Áfidos Asociados a Cultivos de Tomate de Árbol con Síntomas de Virosis en Antioquia, y Nariño (Colombia)

  • Juan Esteban Martínez Duque Universidad Nacional de Colombia
  • José Miguel Cotes Torres Universidad Nacional de Colombia
  • Mauricio Marín Montoya Universidad Nacional de Colombia
Palabras clave: Aphis gossypii, CMV, Macrosiphum euphorbiae, PLRV, PVY.

Resumen

La virosis del tomate de árbol es una de las enfermedades de mayor importancia económica en las regiones productoras de este frutal en Colombia. Recientemente, se ha determinado que esta enfermedad es causada por un complejo viral, del cual hacen parte entre otros: potyvirus, cucumovirus, alfamovirus y polerovirus. Algunas de las especies de estos géneros virales son transmitidas en los cultivos por áfidos. El manejo de las enfermedades virales se fundamenta en el uso de semilla sana y en el control de las poblaciones de sus vectores. Esta investigación se planteó con el fin de identificar algunas de las principales especies de áfidos presentes en los cultivos de tomate de árbol en los cultivos de Antioquia y Nariño, evaluando su posible participación como vectores de los virus Cucumber mosaic virus (CMV), Potato leaf roll virus (PLRV) y Potyvirus, mediante la utilización de pruebas de ELISA, RT-PCR y secuenciación de la cápside viral. Los áfidos obtenidos en los dos departamentos fueron inicialmente diferenciados con base en su morfología en dos grupos: áfidos negros y verdes, procediéndose a su identificación con base en las secuencias de una región del gen mitocondrial Citocromo oxidasa subunidad I (COI), como Aphis gossypii y Macrosiphum euphorbiae. Los resultados de las pruebas serológicas indicaron la presencia de Potyvirus y PLRV para las muestras de A. gossypii de Nariño y Antioquia, mientras que CMV se detectó en ambas especies de áfidos en cultivos de Nariño, pero no en Antioquia. Las pruebas de RT-PCR permitieron la obtención de los amplicones esperados para PLRV y Potato virus Y (PVY) a partir del ARN extraído de individuos de A. gossypii, situación que fue confirmada por secuenciación. Esta investigación plantea la necesidad de realizar estudios epidemiológicos que evalúen la prevalencia de los áfidos detectados en diferentes regiones cultivadoras de tomate de árbol del país, su eficiencia en la transmisión de los virus detectados y su posible patogenicidad cruzada con cultivos como papa, tomate y otras solanáceas en los Andes de Colombia.

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.

Lenguajes:

ES

Referencias bibliográficas

AGRIOS, GN. 2005. Plant Pathology. 5 ed. Elsevier Academy Press. New York. EEUU.

Ahouee K, Habibi M, Mosahebi GH. 2010. Detection of potato leafroll virus isolated from potato fields in Tehran province in

aphids by immunocapture reverse transcription polymerase chain reaction. African Journal of Biotechnology, 9: 2349-2352.

Álvarez J. 2010. Caracterización serológica y molecular de virus asociados al material de siembra de tomate de árbol (Solanum betaceum Bosh) en Colombia. Tesis de Maestría en Microbiología. Universidad Nacional de Colombia Sede Bogotá.

Astier S, Albouy J, Maury Y, Robaglia C, Lecoq H. 2007. Principles of plant virology. Genome, pathogenicity, virus ecology. Science Publishers. París. Francia.

Ayala, M. 2009. Caracterización del Potyvirus asociado a la virosis del tomate de árbol en Antioquia. Tesis de Maestría en Ciencias Agrarias. Universidad Nacional de Colombia, Sede Medellín.

Balaji S, Bhat AI, Eapen SJ. 2008. A phylogenetic reexamination of Cucumber mosaic virus isolates based on 1a 2a 3a and 3b proteins. Indian Journal Virology 19: 17-25

Betancourth C, Goyes R, Bravo DA. 2003. Caracterización biológica de un virus del tomate de árbol (Solanum betaceum Send) en el departamento de Nariño. Fitopatología Colombiana, 27: 7-10.

Cambra M, Gorris MT, Capote N, Asensio M, Martinez MC, Bertolini E, Collado C, Hermoso de Mendoza A, Mataix E. 2004. Epidemiology of Plum pox virus in Japanese Plums in Spain. Acta Horticulturae, 657: 195-200.

Clark RG, Converse RH, Kojima M. 1980. Enzyme-linked immunosorbant assay to detect potato leafroll virus in potato tubers and viroliferous aphids. Plant Disease, 64: 43-45.

Cordero, M. 2008. El virus del enrollamiento de la hoja de papa (PLRV). Temas de Ciencia y Tecnología, 12: 37-49.

Cruz J. 2005. Identificación de virus en Solanum betaceum. Trabajo de grado Ingeniería Agronómica. Facultad de Agronomía. Universidad Nacional de Colombia sede Bogotá.

Eagles R. 1994. Tamarillo mosaic potyvirus: characterization and resistance. Tesis Doctoral. School of Biological sciences, University of Auckland. Nueva Zelanda.

Fabre F, Kervarrec C, Mieuzet L, Riault G, Vialatte A, Jacquot E. 2003. Improvement of Barley yellow dwarf virus-PAV detection in single aphids using a fluorescent real-time RT-PCR. Journal of Virological Methods, 110: 51-60.

Foottit RG, Maw EL, von Dohlen CD, Hebert P. 2008. Species identification of aphids (Insecta: Hemiptera: Aphididae) through DNA barcodes. Molecular Ecology Resources 8: 1189-1201.

García-Arenal F, Escriu F, Aranda MA, Alonso-Prados JL, Malpica JM, Fraile A. 2000. Molecular epidemiology of Cucumber mosaic virus and its satellite RNA. Virus Research 71: 1-8.

Gil JF, Ayala M, Marín M, González, P. 2009. Identificación de potyvirus en cultivos de tomate de árbol (Solanum betaceum cav.) en Antioquia mediante detección serológica. Revista Politécnica, 5: 112-120.

Hull R. 2004. Mathew’s Plant virology. 4 ed. Elsevier Academic Press. New York. EEUU.

Jaramillo M. 2009. Análisis serológico y molecular de virus asociados al cultivo de tomate de árbol (Solanum betaceum) en Colombia. Tesis de Maestría en Biotecnología. Universidad Nacional de Colombia sede Medellín.

Khan JA, Dijkstra J. 2006. Handbook of plant virology. Food Products Press. New York. EEUU.

Marín M, López A, Freitas L, Uribe S. 2009. Caracterización molecular de Euptychiina (Lepidoptera: Satyrinae) del norte de la Cordillera Central de los Andes. Revista Colombiana Entomología, 35: 235-244.

Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural. Observatorio agrocadenas Colombia. http://www.agrocadenas.gov.co, 20. En.07.

Matthews RE. 1993. Diagnosis of plant virus diseases. CRC Press. New Zealand.

Nie X, Singh RP. 2001. A novel usage of random primers for multiplex RT-PCR detection of virus and viroid in aphids, leaves, and tubers. Journal of Virological Methods, 91: 37-49.

Olmos A, Bertolini E, Gil M, Cambra M. 2005. Real-time assay for quantitative detection of non-persistently transmitted Plum pox virus RNA targets in single aphids. Journal of Virological Methods, 128: 151-155.

Ortiz RB, Moya A, Martinez TD. 2004. Molecular systematics of aphids (Homoptera: Aphididae): new insights from the long-wavelength opsin gene. Molecular Phylogenetics and Evolution 30: 24-37.

Reinbold C, Herrbach E, Brault V. 2003 Posterior midgut and hindgut are both sites of acquisition of Cucurbit Aphid-borne Yellows Virus in Myzus persicae and Aphis gossypii. Journal of General Virology 84: 3473-3484.

Rizos H, Gunn L, Pares RD, Gillings MR. 1992. Differentiation of cucumber mosaic virus isolates using the polymerase chain reaction. Journal of General Virology, 73: 2099-2103.

Salazar, LF. 1995. Los virus de la papa y su control. Centro Internacional de la Papa CIP, Perú, 226 p.

Saldarriaga A, Bernal J. 1994. Virus en tomate de árbol (Cyphomandra betacea Sendt). XV Congreso Asociación Colombiana de Fitopatología ASCOLFI. Santafé de Bogotá, Colombia.

Sánchez MV, Agüero R, Rivera C. 2001. Plantas hospederas de Aphis gossypii (Aphididae), vector de virus del melón Cucumis melo (Cucurbitaceae) en Costa Rica. Revista Biología Tropical, 49: 305-311.

Schubert J, Fomitcheva V, Sztangret-Wisniewska J. 2007. Diferentiation of Potato virus Y strains using improved sets of diagnostic PCR primers. Journal of Virological Methods, 140: 66-74.

Singh RP, Kurz J, Boiteau G, Bernard G. 1995. Detection of Potato leafroll virus in single aphids by the reverse transcription polymerase chain reaction and its potential epidemiological application. Journal of Virological Methods, 55: 133-143.

Singh RP, Kurz J, Boiteau G. 1996. Detection of styletborne and circulative potato viruses in aphids by duplex reverse transcription polymerase chain reaction. Journal of Virological Methods, 59: 189–196.

Singh RP, Kurz, J, Boiteau G, Moore LM. 1997. Potato leafroll virus detection by RT-PCR in field-collected aphids. American Potato Journal, 74: 305-313.

Sokhandan N, Rasaei M, Nourinejhad S. Detection, Differentiation and Phylogenetic Analysis of Cucumber Mosaic Virus Isolates from Cucurbits in the Northwest Region of Iran. Virus Genes, 32: 277-288.

Stahls G, Savolainen E. 2008. MtDNA COI barcodes reveal cryptic diversity in the Baetis vernus group (Ephemeroptera, Baetidae). Molecular Phylogenetics and Evolution, 46: 82-87.

Tamayo, PJ. 1990. Mosaico del tomate de árbol. ASCOLFI Informa,16: 54-55.

Tamayo PJ. 1996. Enfermedades Virales del tomate de árbol (Cyphomandra betacea (Cav).Sendt.) en Colombia. ASCOLFI Informa, 22:26-29.

Vizuete B, Insuasti ML, Ochoa J, Ellis M. 1990. Biological and serological characterization of tree tomato virus diseases in Ecuador. INIAP, Ohio State University. 3 p.

Yepes F. 1999. Algunos artrópodos asociados a viveros de frutales. Lunes Entomológico. Universidad Nacional de Colombia sede Medellín.

Yu C, Jianxiang W, Xueping Z. 2005. Detection and subgrouping of Cucumber mosaic virus isolates by TAS-ELISA and immunocapture RT-PCR. Journal of Virological Methods, 123: 155-161.

Cómo citar
Martínez Duque, J. E., Cotes Torres, J. M., & Marín Montoya, M. (2016). Detección Serológica y Molecular de Virus en Áfidos Asociados a Cultivos de Tomate de Árbol con Síntomas de Virosis en Antioquia, y Nariño (Colombia). Revista Facultad De Ciencias Básicas, 6(2), 182–197. https://doi.org/10.18359/rfcb.2073
Publicado
2016-09-01
Sección
Artículos

Métricas

Crossref Cited-by logo
QR Code